細胞經基因修飾后會改變其生物學特性，同時也會帶來新的安全性風險，如基因編輯脫靶風險、載體插入突變風險、載體重組風險、表達的轉基因產物的風險等。在制定非臨床研究計劃時，除參考《細胞zhilliao產品研究與評價技術指導原則》（試行）中的對細胞zhilliao產品的一般要求外，還應具體問題具體分析，基于產品特點和目前已有的科學認知，結合擬定適應癥、患者人群、給藥途徑和給yaofang案等方面的考慮，科學合理的設計和實施非臨床研究，充分表征產品的藥理學、毒理學和藥代動力學特征。在進行獲益風險評估時，還應重點關注由非臨床向臨床過渡時非臨床研究的局限性和風險預測的不確定性。脫靶檢測技術，推薦唯可生物，實驗實力強，專業性高，檢測效率高，結果準確率高。常州基因編輯脫靶檢測安評

Cas9蛋白是一種切割外來DNA的酶，像一把分子剪刀。該蛋白通常與兩個RNA分子結合：crRNA和另一個稱為tracrRNA（或“反式jihuocrRNA”）。這兩個RNA分子引導Cas9到它將進行切割的目標部位。這段DNA是與crRNA的20個核苷酸互補的。CRISPR技術是從細菌和古細菌的自然防御機制中改編而來的。這些生物體使用CRISPR衍生的RNA和各種Cas蛋白，包括Cas9，來阻止病毒和其他異物的攻擊。它們主要通過切碎和破壞外來入侵者的DNA來做到這一點。當這些組件被轉移到其他更復雜的生物體中時，它允許對基因進行操縱，或“編輯”。嘉興高精度脫靶檢測報告針對已經獲得的有切割能力的sgRNA，需要進一步明確其體內脫靶效應。

誘導多能干細胞來源的細胞產品。誘導多能干細胞（inducedpluripotentstemcell，iPS）自身具有致瘤性風險，在體內可形成畸胎瘤，整合病毒載體的使用和誘導多能性可能增加iPS細胞插入致突變性和致性的風險。因此，應在shou次臨床試驗前完成致瘤性試驗。若設計科學合理，能夠滿足評價要求，也可在持續時間足夠長的毒性研究中評估致瘤性風險。體內致瘤性試驗建議采用摻入未分化iPS細胞的細胞產品作為陽性對照，以確認實驗系統的靈敏度。如果iPS細胞設計了機制以降低致瘤風險，應在體內試驗中確認/驗證此類機制的功能

BLESS：利用生物素標簽對DSBs進行原位標記，后經PCR擴增實現對于生物素標記片段的富集，并通過二代測序實現脫靶位點檢測。直接檢測細胞中的切割位點，靈敏度與細胞、組織密切相關。LAM-HTGTS，片段化的gDNA經過LAM-PCR引入接頭，然后進行全基因組易位測序。高通量的全基因組范圍檢測，可準確檢測DSBs引發的重排。GUIDE-Seq，將dsODN    s標簽整合到DSBs位點，通過二代測序檢測這些標簽所在的基因組區域，從而確定脫靶突變的位置。廣使用的細胞內檢測方法。能檢測低頻脫靶突變。Digenome-Seq，片段化的gDNA與CRISPR/RNP混合孵育，進行全基因組測序檢測脫靶。全基因組測序，直接檢測切割位點，能檢測低頻脫靶突變。種子基因脫靶檢測，推薦唯可生物，實驗實力強，專業性高，檢測效率高，結果準確率高。

通常不需要進行標準的遺傳毒性組合試驗，但應根據基因zhiliao產品的特點、產品的具體適應癥、載體的已有信息、導入基因序列結構等，評估基因zhiliao產品整合進基因組的可能性，判斷是否需要開展另外的遺傳毒性研究，如研究基因組修飾的發生情況，并檢測隨后可能發生的異常細胞行為；評估插入突變（插入位點、插入拷貝數等）引起的遺傳毒性風險。當基因zhiliao產品采用基因編輯或轉座子技術時，需要關注脫靶編輯、轉座子轉座印跡引起的遺傳毒性問題；鑒定/表征基因組整合位點。檢測脫靶效應比較好的方法:CIRCLE-seq。基因編輯脫靶檢測方法

脫靶檢測評估，推薦唯可生物，實驗實力強，專業性高，檢測效率高，結果準確率高。常州基因編輯脫靶檢測安評

基于已有科學經驗和既往非臨床/臨床研究結果，如果認為基因修飾細胞所采用的載體系統可將外源基因整合到細胞基因組中并可在體內長期存續，需綜合分析以上風險因素，評估潛在的插入突變、致瘤/致性風險。非臨床研究，應采用具有代表性的基因轉導細胞進行基因整合位點分析，分析細胞的克隆組成以及在關注基因（如liu相關調控基因）附近有無優先整合跡象，含有關注整合位點的細胞有無優先異常增殖。對于嵌合抗原受體（Chimericantigenreceptor，CAR）或T細胞受體（Tcellreceptor，TCR）修飾的免疫細胞，應盡可能采用多種方法評估其靶點相關毒性和脫靶毒性風險。常州基因編輯脫靶檢測安評