有研究發(fā)現，桿狀病毒表達載體體系BEV生產的rAAV發(fā)生了與293生產體系不同的衣殼蛋白翻譯后修飾（post-translationalmodifications,PTMs）。這一差異是否會影響載體趨向性和轉導效率還需要進一步驗證。除此之外，桿狀病毒多重infection會導致載體蛋白VP1、VP2和VP3比例不一致。盡管如此，BEV/Sf9系統仍然是一種頗有吸引力的大規(guī)模臨床級載體生產策略。隨著以后對基因藥物需求的增加，AAV載體的需求量也會與日俱增，而BEV系統能夠降低AAV的成本，未來還是很有發(fā)展?jié)摿Φ摹AN HQ高鹽核酸酶在低溫下也能保持高活性。湖南SAN HQ高鹽核酸酶70921-202

在不同的鹽濃度條件下，AAV病毒載體的存在形式不同。低鹽濃度條件下，AAV病毒顆粒表面會通過電荷作用等非特異結合到HCD上，從而產生病毒顆粒團聚現象。隨著溶液鹽濃度上升，AAV病毒顆粒與HCD的離子相互作用會被破壞，AAV病毒顆粒會逐漸解離。當鹽濃度升到更高范圍（>400mM左右），AAV病毒顆粒與HCD的結合更弱，AAV顆粒更穩(wěn)定。因此，在高鹽濃度溶液中，AAV顆粒更加穩(wěn)定，且有數據表明高鹽濃度不會削弱AAV的侵染能力。所以，我們推薦提高AAV病毒生產中的鹽濃度。甘肅基因藥物生產用高鹽核酸酶70921-150ArcticZymes致力于提供高質量產品，具有好的批間一致性、穩(wěn)定可靠的質量。

離子交換層析 (IEC) 是一種簡單、通用且經濟高效的技術，已成為許多載體純化的關鍵步驟。IEC分為陰離子/陽離子交換柱，其中AEC（Anion-exchange chromatography）適用于AAV純化，是大規(guī)模AAV生產中去除空衣殼的主要手段。AAV衣殼亞種之間因表面電荷的差異導致不同的的等電點。空衣殼PI在6.3左右，包裝了完整基因組DNA后的病毒顆粒PI大致為5.9。AAV與基質之間的靜電相互作用正是取決于衣殼的等電點(pI)和緩沖液的pH值。基于這一原理在正電荷固定相上進行樣品的分離純化，去除雜質（如空衣殼和部分衣殼），并有效地回收目的載體。

大規(guī)模生產階段，AAV/LV載體生產流程跟抗體、疫苗類藥物的生產類似，主要包含上游培養(yǎng)、下游純化及制劑部分。上游培養(yǎng)分為質粒開發(fā)、細胞擴增、三質粒共轉染及病毒載體生產等步驟。下游純化分為細胞裂解釋放AAV病毒顆粒（可以通過去污劑、機械作用、高滲或凍融操作等）or收獲細胞上清液得到含LV病毒原液、加入核酸酶以減少宿主細胞核酸污染、澄清是通過離心或過濾等方法去除細胞碎片和雜質等、超濾濃縮以減少后續(xù)色譜純化體系、親合及離子交換等純化得到高純度病毒載體。制劑部分主要是超濾更換緩沖液、過濾除菌及制劑灌裝等。SAN HQ高鹽核酸酶具有熱不穩(wěn)定的特性，在還原劑存在條件下，50℃、30min孵育即可失活；

綜合腺相關病毒AAV制備的三個工藝階段介紹，可以看出下游處理可以占病毒生產總成本的很大一部分，而且難度也是非常大，尤其是純化過程。原因之一是由于有超過100種不同血清型的變體AAV衣殼，不同血清型的AAV蛋白存在差異。因此，各種血清型的表面特性增加AAV純化難度。原因之二是：針對工藝和產品相關的雜質（包括宿主細胞物質，DNA和空衣殼），缺乏一個有效和可重復的平臺方法，尤其是來從空衣殼中分離出完整的衣殼。為了解決以上問題，國內外大的藥企公司都致力于純化新產品的開發(fā)，以期達到：（1）實現病毒顆粒的分離（2）減少產品相關雜質（3）保持效力和產量的目標。使用Benzonase時，不能把載體表面的DNA去除徹底，因而不能阻止純化的病毒載體聚集。浙江SAN HQ TF高鹽核酸酶70921-160

SAN HQ提高核酸污染去除效率，同時提高目標產物產量。湖南SAN HQ高鹽核酸酶70921-202

監(jiān)管部門對HCD的殘留量有明確的規(guī)定。美國FDA發(fā)布的指導原則中指出生物制品HCD殘余限度為 100pg/劑，對于大劑量生物制品如單克隆抗體，根據其殘留DNA來源及給藥途徑，殘留量可放寬至 10ng/劑。細胞基因藥物終產品的DNA殘留有兩種來源，分別是宿主細胞DNA（HCD）和轉染用的質粒。質粒和HCD的存在形式不同，去除效率也差別很大。其中，質粒是裸露的DNA雙鏈，帶強負電荷，通過色譜純化主要是離子交換能夠很高效去除；HCD則是以核小體緊密折疊形成的染色質形式存在，幾乎不以裸DNA形式存在，所以很難去除。湖南SAN HQ高鹽核酸酶70921-202