細胞爬片免疫組化檢測實驗步驟

1、選擇貼壁良好的細胞爬片，用4%多聚甲醛固定后15min后自然晾干。

2、PBS洗3次，每次5min。3、切片放入3%過氧化氫溶液，室溫下孵育10min，以阻斷內源性過氧化物酶。

4、PBS洗3次，每次5min，甩干后5%BSA封閉20min（封閉電荷）。

5、去除BSA液，每張切片加入50μl稀釋的一抗覆蓋組織，4℃過夜。

6、PBS洗3次，每次5min。

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7、去除PBS液，每張切片加50μl-100μl相應種屬的二抗，4℃孵育50min。

8、PBS洗3次，每次5min。

9、去除PBS液，每張切片加50-100μl新鮮配制DAB溶液，顯微鏡控制顯色。

10、顯色完全后，蒸餾水或自來水沖洗，蘇木素復染，1%鹽酸酒精分化（1s），自來水沖洗，氨水返藍，流水沖洗。

11、切片經過梯度酒精（70-100%）10min一個梯度，脫水干燥，二甲苯透明，中性樹膠封固。 免疫組化實驗原理，操作步驟盡在英瀚斯實驗外包。細胞免疫組化

免疫組化實驗所用的抗體

免疫組化實驗中常用的抗體為單克隆抗體和多克隆抗體。單克隆抗體是一個B淋巴細胞克隆分泌的抗體，應用細胞融合雜交瘤技術免疫動物制備。多克隆抗體是將純化后的抗原直接免疫動物后，從動物血中所獲得的免疫血清，是多個B淋巴細胞克隆所產生的抗體混合物。

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免疫組化常用的染色方法

根據標記物的不同分為免疫熒光法，免疫酶標法，親和組織化學法，后者是以一種物質對某種組織成分具有高度親合力為基礎的檢測方法。這種方法敏感性更高，有利于微量抗原(抗體)在細胞或亞細胞水平的定位，其中生物素—抗生物素染色法常用。 安徽小鼠免疫組化注意事項免疫組化protocol，詳情請看英瀚斯生物官網。

免疫組化的發展路程？在臨床病理診斷中，免疫組織化學(IHC)是一種很重要的技術和手段，從20世紀70年代開始，免疫組化技術就應用于病理診斷，對于診斷cancer、cancer分類、判斷預后產生了巨大的影響，同時也擴展了人們對于各種疾病及cancer形成過程的認識，提高了病理診斷與研究水平。但是，隨著免疫組化的廣泛應用，發現免疫組化技術存在一些局限性。深入研究免疫組化原理和技術，必須熟悉各種抗體真陽性反應部位，實現實驗室間免疫組化標準化，使免疫組化在病理診斷中發揮比較大的輔助作用。如果您有免疫組化相關的實驗，可以與我們英瀚斯生物進行聯系。

免疫組化中IHC vs ICC的區別。英瀚斯生物為您說明。除了生物學來源，IHC和ICC在樣品處理的程度上也有所不同。ICC需要透化，要么通過固定過程，要么是單獨的透化步驟，這樣抗體才能與細胞內的靶點相結合。而IHC可能不要單獨的透化步驟，這取決于切片的厚度和固定方法。包埋在石蠟中的IHC切片必須進一步處理，才能進行抗體染色。一旦處理好樣品，IHC和ICC的染色操作就幾乎沒什么差異了。當然，就染色而言，根據所使用的抗體來優化還是少不了的。免疫組化結果怎么看？

免疫組化的顯色系統

免疫組化的顯色系統是將抗原-抗體反應轉化為可見信號的關鍵步驟。常用的免疫組化顯色系統有DAB（3,3'-二氨基聯苯胺）和AEC（3-氨基-9-乙基咔唑）。DAB顯色產生棕色沉淀，適用于光學顯微鏡觀察。AEC顯色產生紅色沉淀，適用于光學顯微鏡觀察，但不適合長期保存。此外，還有熒光顯色系統，如FITC（異硫氰酸熒光素）和TRITC（四甲基羅丹明異硫氰酸酯），適用于熒光顯微鏡觀察。選擇合適的顯色系統需要考慮實驗目的和檢測設備。 關于免疫組化的常見問題匯總。山東做得好的免疫組化檢測

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免疫組化在什么情況下進行組織抗原修復，抗原修復的條件是什么？ 

（1）由于組織中部分抗原在甲醛或多聚甲醛固定過程中，發生了蛋白之間交聯及醛基的封閉作用，從而失去抗原性。通過抗原修復，使得細胞內抗原決定族重新暴露，提高抗原檢測率。

（2）修復方法從強到弱一般分為三種，高壓修復、微波修復、胰酶修復。修復液也分為若干種（具體的可以查閱相關資料，大量的：中性的、高pH的等）。

（3）微波修復，我們一般用6min*4次，效果不錯。

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